Результаты анализа серологического скрининга при обследовании на сифилис пациентов многопрофильного детского стационара

Введение. В настоящее время изменилось клиническое течение сифилиса, что ведет к снижению настороженности населения и поздней диагностике. В связи с этим очень важно для своевременного выявления и снижения заболеваемости сифилиса проводить скрининговое серологическое обследование населения.

Цель исследования — изучить частоту заболеваемости сифилисом при проведении скринингового обследования пациентов и лиц, госпитализированных по уходу за детьми, в многопрофильном детском стационаре.

Материалы и методы. Проведен ретроспективный анализ результатов серологического скрининга на сифилис 9 262 пациентов и лиц, госпитализированных по уходу за детьми, в многопрофильном детском стационаре Областной детской клинической больницы (Екатеринбург), в состав которого входит областной перинатальный центр, с 1 января 2023 г. по 30 сентября 2024 г.

Результаты. В 2023 г. выявлено 2 случая острого заболевания сифилисом у женщин, госпитализированных по уходу за ребенком, а в 2024 г. — 1 у беременной. Все они не предъявляли жалоб и считали себя здоровыми, но представляли эпидемическую опасность для окружающих лиц и медицинского персонала. Также в 2024 г. имели место 2 случая раннего врожденного сифилиса.

Обсуждение. Наличие IgM к Treponema pallidum свидетельствует о недавно приобретенном заболевании (4–6 недель с момента заражения). Выявление только IgG у взрослых пациентов говорит в пользу текущего или перенесенного в анамнезе сифилиса, а у новорожденных о передаче IgG от матери к ребенку через трансплацентарный барьер.

Заключение. Высокая чувствительность трепонемных тестов, используемых в скрининговых исследованиях методом иммуноферментного анализа, снижает вероятность пропуска скрытых форм сифилиса.

1. Castro A, Jost H, Cox D, Fakile Y, Kikkert S, Tun Y, et al. A comparison of the analytical level of agreement of nine treponemal assays for syphilis and possible implications for screening algorithm. BMJ Open. 2013; 3(9):e003347. DOI: https://doi.org/10.1136/bmjopen-2013-003347. Erratum in: BMJ Open. 2013;3(12): e003347corr1. DOI: https://doi.org/10.1136/bmjopen-2013-003347corr1.

2. Bagretsova IA, Sukharev AV, Barsukova IM. Syphilis in an emergency hospital: The state of the issue and unresolved problems. The Scientific Notes of the Pavlov University. 2018;25(4):39–47. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.24884/1607-4181-2018-25-4-39-47.

3. Potekaev NN, Frigo NV, Dmitriev GA, Kitaeva NV, Dolya OV, Gushchin AE, et al. Laboratory diagnostics of syphilis. Modern approaches and perspectives. Part I. Epidemiology. Direct diagnostic methods. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2021;20(6):7–18. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.17116/klinderma2021200617.

4. Gupta R, Vora RV. Congenital syphilis, still a reality. Indian Journal of Sexually Transmitted Diseases and AIDS. 2013;34(1):50–52. DOI: https://doi.org/10.4103/0253-7184.112941.

5. Forrestel AK, Kovarik CL, Katz KA. Sexually acquired syphilis: Laboratory diagnosis, management, and prevention. Journal of the American Academy of Dermatology. 2020;82(1):17–28. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jaad.2019.02.074.

6. Zhang RL, Zhang JP, Wang QQ. Recombinant Treponema pallidum protein Tp0965 activates endothelial cells and increases the permeability of endothelial cell monolayer. PloS One. 2014;9(12):e115134. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0115134.

7. Wende RD, Mudd RL, Know JM, Holder WR. The VDRL slide test in 322 cases of darkfield positive primary syphilis. South Medical Journal. 1971;64(5):633–634. DOI: https://doi.org/10.1097/00007611-19710500000030.

8. Lee K, Park H, Roh EY, Shin S, Park KU, Park MH, et al. Characterization of sera with discordant results from reverse sequence screening for syphilis. BioMed Research International. 2013;2013:269347. DOI: https://doi.org/10.1155/2013/269347.

9. Brautigam CA, Deka RK, Liu WZ, Norgard MV. The Tp0684 (MglB-2) lipoprotein of Treponema pallidum: A glucose-binding protein with divergent topology. PLoS One. 2016;11(8):e0161022. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0161022.

10. Rosanna WP, David M, Kamb ML, Chen XS, Radolf JD, Benzaken AS. Syphilis. Nature Reviews Disease Primers. 2017;12(3):17073. DOI: https://doi.org/10.1038/nrdp.2017.73.

11. Janier M, Unemo M, Dupin N, Tiplica GS, Potocnik M, Patel R. European guideline on the management of syphilis. Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology. 2020;35(3):574–588. DOI: https://doi.org/10.1111/jdv.16946.

12. Sanfilippo AM, Freeman K, Schmitz JL. Comparison of manual and fully automated AIX1000 rapid plasma reagin assays for laboratory diagnosis of syphilis. Journal of Clinical Microbiology. 2018;56(8):e00214-18. DOI: https://doi.org/10.1128/jcm.00214-18.

13. Bromberg K, Rawstron S, Tannis GJ. Diagnosis of congenital syphilis by combining Treponema pallidum-specific IgM detection with immunofluorescent antigen detection for T. pallidum. The Journal of Infectious Diseases. 1993;168(1):238–242. DOI: https://doi.org/10.1093/infdis/168.1.238.

14. Rawstron SA, Mehta S, Bromberg K. Evaluation of a Treponema pallidum-specific IgM enzyme immunoassay and Treponema pallidum western blot antibody detection in the diagnosis of maternal and congenital syphilis. Journal of Sex Transition Diseases. 2004;31(2):123–126. DOI: https://doi.org/10.1097/01.OLQ.0000109941.60065.65.

15. Sánchez PJ, Wendel GD, Grimprel E, Goldberg M, Hall M, Arencibia-Mireles O, et al. Evaluation of molecular methodologies and rabbit infectivity testing for the diagnosis of congenital syphilis and neonatal central nervous system invasion by Treponema pallidum. The Journal of Infectious Diseases. 1993;167(1):148–157. DOI: https://doi.org/10.1093/infdis/167.1.148.

16. Serwin AB, Chodynicka B. Diagnostyka serologiczna kiły — aktualne problemy i kontrowersje [Serological diagnosis of syphilis — current problems and controversies]. Przegląd Epidemiology. 2009;63(4):519–523. PMID: https://pubmed.gov/20120950.

17. Young H. Syphilis. Serology. Dermatological Clinics. 1998;16(4):691–698. DOI: https://doi.org/10.1016/s07338635(05)70034-6.

18. Spiteri G, Unemo M, Mårdh O, Amato-Gauci AJ. The resurgence of syphilis in high-income countries in the 2000s: A focus on Europe. Epidemiology and Infection. 2019;147:e143. DOI: https://doi.org/10.1017/S0950268819000281.

19. Onesimo R, Buonsenso D, Gioè C, Valetini P. Congenital syphilis: Remember to not forget. BMJ Case Reports. 2012;2012: bcr0120125597. DOI: https://doi.org/10.1136/bcr.01.2012.5597.

20. Arriagada D, Donoso A, Cruces P, Díaz F. Congenital syphilis: Presenting as septic shock alter the neonatal period. Revista Chilena de Infectología. 2012;29(5):558–563. DOI: https://doi.org/10.4067/S071610182012000600017.

21. Matyskina NV, Taranushenko TE. Early congenital syphilis: Solved and unresolved problems of diagnosis. Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics. 2019;64:(2):75–80 (In Russ). DOI: https://doi.org/10.21508/1027-4065-2019-64-2-75-80.

22. Dmitriev GA, Frigo NV, Negasheva ES, Kitaeva NV, Dolya OV. New approaches to laboratory diagnosis of neurosyphilis. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2022;21(2):166–172. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.17116/klinderma202221021166.

23. Geisler WM. The prozone phenomenon in syphilis testing. South Medical Journal. 2004;97(4):327–328. DOI: https://doi.org/10.1097/01.SMJ.0000092571.52330.13.

24. Liu LL, Lin LR, Tong ML, Zhang HL, Huang SJ, Chen YY, et al. Incidence and risk factors for the prozone phenomenon in serologic testing for syphilis in a large cohort. Clinical Infection Diseases. 2014;59(3):384–389. DOI: https://doi.org/10.1093/cid/ciu325.

25. Potekaev NN, Frigo NV, Dmitriev GA, Kitaeva NV, Dolya OV, Gushchin AE, et al. Laboratory diagnosis of syphilis. Current approaches and perspectives. Part II. Indirect (serological) diagnostic methods. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2022;21(3):271–280. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.17116/klinderma202221031271.