Морфологическое исследование механизмов формирования спаек в брюшной полости и при воздействии окисленным декстраном в эксперименте
https://doi.org/10.52420/umj.23.6.35
EDN: DPUAHC
Аннотация
Введение. После хирургических вмешательств нередко в брюшной полости возникают спайки, которые могут приводить к тяжелым осложнениям и снижать качество жизни пациентов. Механизмы формирования спаек связаны с повреждением брюшины, воспалительной реакцией и фиброзом, недостаточным фагоцитозом макрофагами.
Материалы и методы. У крыс самцов породы Wistar (n = 20) индуцировано формирование спаек. Сформировано две группы животных по 10 особей в каждой: 1 — спонтанное формирование спаек (контроль); 2 — введение по 2 мл 5 %-го водного раствора окисленного декстрана (ОД). Животные выведены из эксперимента на 7 и 21 сутки, проведено сравнительное исследование спаек брюшной полости в группах. Подсчитаны количество макрофагов и нейтрофильных гранулоцитов в воспалительных инфильтратах спаек, численная плотность клеток, экспрессирующих TNFα, IL-1, E-кадгерин, CK-18, виментин.
Результаты. У крыс, получавших ОД (2 группа), в сравнении с животными 1 группы (контроль) содержание нейтрофильных гранулоцитов на 7 и 21 сутки в инфильтратах было меньшим, а макрофагов большим. Численная плотность клеток, экспрессировавших IL-1 и TNFα, была меньшей у крыс 2 группы, наиболее выражены отличия были на 7 сутки эксперимента. Экспрессия виментина, E-кадгерина, CK-18 была более выраженной (в 2 раза) у животных 1 группы на 7 сутки эксперимента в сравнении с таковой у животных 2 группы, однако на 21 сутки отличий экспрессии виментина, E-кадгерина при сравнении между группами не наблюдалось, экспрессия СК-18 была большей у крыс 2 группы.
Заключение. ОД влияет на функциональное состояние макрофагов, тормозит экспрессию IL-1 и TNFα, способствует более эффективному фагоцитозу, препятствуя формированию и фиброзированию спаек, реализации мезенхимально-эпителиального перехода, способствует регенерации мезотелия.
Ключевые слова
Об авторах
М. А. Карпов
Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины; Новосибирский государственный медицинский университет
Россия
Конфликт интересов:
Россия
Михаил Александрович Карпов — кандидат медицинских наук, ведущий научный сотрудник лаборатории структурных основ патогенеза социально значимых заболеваний, Научно-исследовательский институт экспериментальной и клинической медицины, Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины; доцент кафедры патологической анатомии, Новосибирский государственный медицинский университет
Новосибирск
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии явных и потенциальных конфликтов интересов.
А. П. Надеев
Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины; Новосибирский государственный медицинский университет
Россия
Конфликт интересов:
Россия
Александр Петрович Надеев — доктор медицинских наук, профессор, ведущий научный сотрудник лаборатории структурных основ патогенеза социально значимых заболеваний, Научно-исследовательский институт экспериментальной и клинической медицины, Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины; заведующий кафедрой патологической анатомии, Новосибирский государственный медицинский университет
Новосибирск
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии явных и потенциальных конфликтов интересов.
В. А. Шкурупий
Новосибирский государственный медицинский университет
Россия
Конфликт интересов:
Россия
Вячеслав Алексеевич Шкурупий — доктор медицинских наук, профессор, академик Российской академии наук, профессор кафедры патологической анатомии
Новосибирск
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии явных и потенциальных конфликтов интересов.
С. В. Залавин
Новосибирский государственный медицинский университет
Россия
Конфликт интересов:
Россия
Светлана Васильевна Залавина — доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой гистологии, эмбриологии и цитологии имени профессора М. Я. Субботина
Новосибирск
Конфликт интересов:
Авторы заявляют об отсутствии явных и потенциальных конфликтов интересов.
Список литературы
1. Wiseman D. Advances, retreats and challenges in adhesions research. Innova. 2016;(2):7–29. EDN: https://elibrary.ru/xyborf.
2. Samartsev V, Gavrilov V, Pushkarev B, Parshakov A, Kuznetsova MP, Kuznetsova M. Peritoneal adhesion: State of issue and modern methods of prevention. Perm Medical Journal. 2019;36(3):72–90. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.17816/pmj36372-90.
3. Eren EC, Basim P. Role of peripheral inflammatory biomarkers, transforming growth factor-beta and interleukin 6in predicting peritoneal adhesions following repeat cesarean delivery. Irish Journal of Medical Science. 2022;191(6):2697–2704. DOI: https://doi.org/10.1007/s11845-021-02878-8.
4. Coccolini F, Ansaloni L, Manfredi R, Campanati L, Poiasina E, Bertoli P, et al. Peritoneal adhesion index (PAI): Proposal of a score for the “ignored iceberg” of medicine and surgery. World Journal of Emergency Surgery. 2013;8:6. DOI: https://doi.org/10.1186/1749-7922-8-6.
5. Liu XR, Liu F, Li ZW, Liu XY, Zhang W, Peng D. The risk of postoperative complications is higher in stage I–III colorectal cancer patients with previous abdominal surgery: A propensity score matching analysis. Clinical and Translational Oncology. 2023;25(12):3471–3478. DOI: https://doi.org/10.1007/s12094-023-03210-9.
6. Kurtulus I, Basim S, Ozdenkaya Y. Can serum tumor necrosis factor-alpha predict peritoneal adhesions prior to secondary laparoscopic procedures? Journal of Visceral Surgery. 2023;160(4):261–268. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jviscsurg.2022.12.007.
7. Atta HM, El-Rehany M, Roeb E, Abdel-Ghany H, Ramzy MM, Gaber SS. Mutant matrix metalloproteinase-9 reduces postoperative peritoneal adhesions in rats. International Journal of Surgery. 2016;26:58–63. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijsu.2015.12.065.
8. Ainal A, Saydam S. Effect of intraperitoneal and systemic sirolimus administration on postoperative peritoneal adhesions in rats. Journal of Basic and Clinical Health Sciences. 2021;5(3):195–200. DOI: https://doi.org/10.30621/jbachs.977476.
9. Gül A, Kotan Ç, Dilek I, Gül T, Tas A, Berktas M. Effects of methylene blue, indigo carmine solution and autologous erythrocyte suspension on formation of adhesions aſter injection into rats. Journal of Reproduction and Fertility. 2000;120(2):225–229. DOI: https://doi.org/10.1530/reprod/120.2.225.
10. Sahputra R, Dejyong K, Woolf AS, Mack M, Allen JE, Rückerl D, et al. Monocyte-derived peritoneal macrophages protect C57BL/6 mice against surgery-induced adhesions. Frontiers in Immunology. 2022;13:1000491. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.1000491.
11. Ito T, Shintani Y, Fields L, Shiraishi M, Podaru MN, Kainuma S, et al. Cell barrier function of resident peritoneal macrophages in post-operative adhesions. Nature Communications. 2021;12(1):2232. DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-021-22536-y.
12. Strizova Z, Benesova I, Bartolini R, Novysedlak R, Cecrdlova E, Foley LK, et al. M1/M2 macrophages and their overlaps — myth or reality? Clinical Science. 2023;137(15):1067–1093. DOI: https://doi.org/10.1042/CS20220531.
13. Manda-Handzlik A, Cieloch A, Kuźmicka W, Mroczek A, Stelmaszczyk-Emmel A, Demkow U, et al. Secretomes of M1 and M2macrophages decrease the release of neutrophil extracellular traps. Scientific Reports. 2023;13:15633. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-023-42167-1.
14. Tang J, Xiang Z, Bernards MT, Chen S. Peritoneal adhesions: Occurrence, prevention and experimental models. Acta Biomaterialia. 2020;116:84–104. DOI: https://doi.org/10.1016/j.actbio.2020.08.036.
15. Zindel J, Mittner J, Bayer J, April-Monn SL, Kohler A, Nusse Y, et al. Intraperitoneal microbial contamination drives post-surgical peritoneal adhesions by mesothelial EGFR-signaling. Nature Communications. 2021; 12(1):7316. DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-021-27612-x.
16. Yang L, Li Z, Chen Y, Chen F, Sun H, Zhao M, et al. Elucidating the novel mechanism of ligustrazine in preventing postoperative peritoneal adhesion formation. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2022;2022:9226022. DOI: https://doi.org/10.1155/2022/9226022.
17. Shkurupiy VA, Kim LB, Kovner AV, Cherdantseva LA. Connective tissue and problems of its pathological conditions. Bulletin of Siberian Medicine. 2017;16(4):75–85. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.20538/1682-0363-2017-4-75-85.
18. Karpov MA, Shkurupy VA, Troitskii AV. The study of efficiency of the approach to prevent the adhesions in the abdominal cavity of rats. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2021;171(4):416–420. DOI: https://doi.org/10.1007/s10517-021-05240-1.
19. Serebrennikova SN, Seminsky IZh, Guzovskaiia EV, Gutsol LO. Inflammation as a fundamental pathological process: Lecture 2 (cellular component). Baikal Medical Journal. 2023;2(2):65–76. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.57256/2949-0715-2023-2-65-76.
20. Othman A, Sekheri M, Filep JG. Roles of neutrophil granule proteins in orchestrating inflammation and immunity. The FEBS Journal. 2022;289(14):3932–3953. DOI: https://doi.org/10.1111/febs.15803.
21. Elrod J, Heuer A, Knopf J, Schoen J, Schönfeld L, Trochimiuk M, et al. Neutrophil extracellular traps and DNases orchestrate formation of peritoneal adhesions. iScience. 2023;26(12):108289. DOI: https://doi.org/10.1016/j.isci.2023.108289.
22. Puchkina G, Sulima A, Davidova A. Immunocompetent cells in the tissue of adhesives of patients with adhesion process in the small pelvis. Medical Herald of the South of Russia. 2021;12(3):72–77. (In Russ., Eng.). DOI: https://doi.org/10.21886/2219-8075-2021-12-3-72-77.
23. Mutsaers SE, Prêle CM, Pengelly S, Herrick SE. Mesothelial cells and peritoneal homeostasis. Fertility and Sterility. 2016;106(5):1018–1024. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2016.09.005.
24. Semenov DA. The role of mesothelial cellsin compensatory-adaptive pleura reactionsin pathology (review of literature). Amur Medical Journal. 2019;(4):60–64. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.22448/AMJ.2019.4.60-64.
25. Sandoval P, Jiménez-Heffernan JA, Guerra-Azcona G, Pérez-Lozano ML, Rynne-Vidal Á, Albar-Vizcaíno P, et al. Mesothelial-to-mesenchymal transition in the pathogenesis of post-surgical peritoneal adhesions. The Journal of Pathology. 2016;239(1):48–59. DOI: https://doi.org/10.1002/path.4695.
Дополнительные файлы
Рецензия
Для цитирования:
Карпов МА, Надеев АП, Шкурупий ВА, Залавин СВ. Морфологическое исследование механизмов формирования спаек в брюшной полости и при воздействии окисленным декстраном в эксперименте. Уральский медицинский журнал. 2024;23(6):35–44. https://doi.org/10.52420/umj.23.6.35. EDN: DPUAHC
For citation:
Karpov MA, Nadeev AP, Shkurupiy VA, Zalavina SV. Morphological Study of the Mechanisms of Formation of Adhesions in the Abdominal Cavity and Exposure to Oxidized Dextran in an Experiment. Ural Medical Journal. 2024;23(6):35–44. (In Russ.) https://doi.org/10.52420/umj.23.6.35. EDN: DPUAHC
Просмотров:
173
Послать статью по эл. почте 