Оценка иммунного статуса женщин после процедуры абляционного фракционного лазерного фототермолиза, проведенной с целью коррекции инволюционных изменений кожи лица

Введение. В основе абляционного фракционного лазерного фототермолиза (А-ФЛФ), используемого для омоложения стареющей кожи, лежит ее контролируемое повреждение. В запускаемых процессах репаративной регенерации принимают участие факторы иммунной системы, которая, в свою очередь, также подвергается возрастному ремоделированию или иммуностарению.
Цель работы – оценить в динамике реакцию иммунной системы на процедуру А-ФЛФ, проведенную для коррекции возраст-ассоциированных изменений кожи лица.
Материалы и методы. В исследование включены 25 женщин от 42 до 55 лет, которым был проведена процедура А-ФЛФ кожи лица с помощью эрбиевого лазера. До процедуры, на 8-е и 24-е сутки после нее в периферической крови подсчитывали количество лей коцитов, моноцитов, ней трофилов, лимфоцитов, Т-лимфоцитов, Т-хелперов, цитотоксических Т-клеток, регуляторных Т-клеток, NKT-лимфоцитов, NK-лимфоцитов; изучали фагоцитарную функцию ней трофилов и моноцитов, НСТ-редуцирующую и лизосомальную активность ней трофилов; определяли количество IgA, IgM, IgG, IL-4, IL-6, IL-8, IL-10, ЦИК.
Результаты. На восьмые сутки после А-ФЛФ значимо повышалось число ней трофилов, показатели фагоцитоза ней трофилов и моноцитов, количество лимфоцитов, регуляторных Т-клеток, уровень IL-6 и IL-8; параллельно снижалось число CD11b+ NK-лимфоцитов, CD11b+ NKT-лимфоцитов, концентрации IgA, IgG, IL-10. На 24-е сутки количественно-функциональные показатели ней трофилов, общее число лимфоцитов, концентрации IgA и IgG не имели достоверных отличий от допроцедурных значений ; фагоцитарные параметры моноцитов, количество регуляторных Т-клеток, уровень IL-6 и IL-8 оставались достоверно выше, а число CD11b+ NK-лимфоцитов, CD11b+ NKT-лимфоцитов и IL-10, наоборот, значимо ниже исходного уровня.
Обсуждение. Выявленные изменения показателей системного иммунитета после А-ФЛФ косвенно свидетельствуют как о прямом, так и о регуляторно-модулирующем влиянии иммунных факторов на восстановление и ремоделирование кожи после лазерного повреждения.
Заключение. Процедура А-ФЛФ вызывает реакцию со стороны как клеточных, так и гуморальных факторов иммунной системы, преимущественно врожденного иммунитета.

1. Trojahn C, Dobos G, Lichterfeld A et al. Characterizing facial skin ageing in humans: disentangling extrinsic from intrinsic biological phenomena. BioMed Res Int 2015;2015:318586. https://doi.org/10.1155/2015/318586.

2. Эрнандес Е.И., Марголина А.А. Новая косметология. Основы современной косметологии. М. : ООО «ИД «Косметика и медицина»; 2017. 592 с.

3. Haydonta V, Bernard BA, Fortunel NO. Age-related evolutions of the dermis: Clinical signs, fibroblast and extracellular matrix dynamics. Mech Ageing Dev 2019;177:150–156. https://doi.org/10.1016/j.mad.2018.03.006.

4. Russell-Goldman E, Murphy GF. The pathobiology of skin aging. new insights into an old dilemma. Am J Pathol 2020;190(7):1356–1369. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2020.03.007.

5. Gromov P, Skovgaard GL, Palsdottir H et al. Protein profiling of the human epidermis from the elderly reveals up-regulation of a signature of interferon-γ-induced polypeptides that includes manganese-superoxide dismutase and the p85β subunit of phosphatidylinositol 3-kinase. Mol Cell Proteomics 2003;2(2):70–84. https://doi.org/10.1074/mcp.M200051-MCP200.

6. Мантурова Н.Е., Городилов Р.В., Кононов А.В. Старение кожи: механизмы формирования и структурные изменения. Анналы пластической, реконструктивной и эстетической хирургии. 2010;1:88–92.

7. Lupa DMW, Kalfalah F, Safferling K et al. Characterization of Skin Aging-Associated Secreted Proteins (SAASP) produced by dermal fibroblasts isolated from intrinsically aged human skin. J Invest Dermato. 2015;135(8):1954–1968. https://doi.org/10.1038/jid.2015.120.

8. Solé-Boldo L, Raddatz G, Schütz S et al. Single-cell transcriptomes of the human skin reveal age-related loss of fibroblast priming. Commun Biol 2020;3(1):188. https://doi.org/10.1038/s42003-020-0922-4.

9. Lee H, Hong Y, Kim M. Structural and functional changes and possible molecular mechanisms in aged skin. Int J Mol Sci 2021;22(22):12489. https://doi.org/10.3390/ijms222212489.

10. Manstein D, Herron GS, Sink RK et al. Fractional photothermolysis: a new concept for cutaneous remodeling using microscopic patterns of thermal injury. Lasers Surg Med 2004. Vol. 34, issue 5. P. 426–438. https://doi.org/10.1002/lsm.20048.

11. Jih MH, Kimyai-Asadi A. Fractional photothermolysis: a review and update. Semin Cutan Med Surg 2008;27(1):63–71. https://doi.org/10.1016/j.sder.2008.01.002.

12. Михайлова Н.П. Сочетание лазерных технологий и инъекционных методов в коррекции возрастных изменений кожи. Мезотерапия 2014;1(25):16–26.

13. Краюшкин П.В. Фракционный фототермолиз: современный взгляд на метод. Аппаратная косметология 2016;1:56–70.

14. Sherrill JD, Finlay D, Binder RL et al. Transcriptomic analysis of human skin wound healing and rejuvenation following ablative fractional laser treatment. PLoS One 2021;16(11):e0260095. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0260095.

15. Trelles MA, Velez M, Mordon S. Correlation of histological findings of single session Er:YAG skin fractional resurfacing with various passes and energies and the possible clinical implications. Lasers Surg Med 2008;40(3):171–177. https://doi.org/10.1002/lsm.20607.

16. Карабут М.М., Гладкова Н.Д., Фельдштейн Ф.И. Фракционный лазерный фототермолиз в лечении кожных дефектов: возможности и эффективность (обзор). Современные технологии в медицине. 2016;8(2):98–108. https://doi.org/10.17691/stm2016.8.2.14.

17. Ellis S, Lin EJ, Tartar D. Immunology of wound healing. Cur Dermatol Rep 2018;7:350–358. https://doi.org/10.1007/s13671-018-0234-9.

18. Nguyen AV, Soulika AM. The dynamics of the skin’s immune system. Int J Mol Sci 2019;20(8):1811. https://doi.org/10.3390/ijms20081811.

19. Larouche J, Sheoran S, Maruyama K, Martino MM. Immune regulation of skin wound healing: mechanisms and novel therapeutic targets. Adv Wound Care 2018;7(7):209–231. https://doi.org/10.1089/wound.2017.0761.

20. Долгушин И.И., Андреева Ю.С., Савочкина А.Ю. Нейтрофильные внеклеточные ловушки и методы оценки функционального статуса нейтрофилов. М. : Издательство РАМН; 2009. 208 с.

21. Rodrigues M, Kosaric N, Bonham CA, Gurtner GC. Wound healing: a cellular perspective. Physiol Rev 2019;99(1):665–706. https://doi.org/10.1152/physrev.00067.2017.

22. Johnson BZ, Stevenson AW, Prêle CM et al. The role of IL-6 in skin fibrosis and cutaneous wound healing. Biomedicines 2020;8(5):101. https://doi.org/10.3390/biomedicines8050101.

23. Табаков Д.В., Заботина Т.Н., Борунова А.А. с соавт. Гетерогенность популяций NK- и NKT-лимфоцитов у здоровых доноров. Российский биотерапевтический журнал 2016;15(1):105–106.

24. Christensen JE, Andreasen SØ, Christensen JP, Thomsen AR. CD11b expression as a marker to distinguish between recently activated effector CD8+ T cells and memory cells. Int Immunol 2001;13(4):593–600. https://doi.org/10.1093/intimm/13.4.593.

25. Tanno H, Kawakami K, Ritsu M et al. Contribution of invariant natural killer T cells to skin wound healing. Am J Pathol 2015;185(12):3248–3257. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2015.08.012.

26. Cañedo-Dorantes L, Mara Cañedo-Ayala M. Skin acute wound healing: a comprehensive review. Int J Inflam 2019;2019:3706315. https://doi.org/10.1155/2019/3706315.

27. McKee SJ, Mattarollo SR, Leggatt GR. Immunosuppressive roles of natural killer T (NKT) cells in the skin. J Leukoc Biol 2014;96(1):49–54. https://doi.org/10.1189/jlb.4RU0114-001R.

28. Tanno H, Kawakami K, Kanno E et al. Invariant NKT cells promote skin wound healing by preventing a prolonged neutrophilic infammatory response. Wound Repair Regen 2017;25(5):805–815. https://doi.org/10.1111/wrr.12588.

29. Tiemessen MM, Jagger AL, Evans HG et al. CD4+CD25+Foxp3+ regulatory T cells induce alternative activation of human monocytes/macrophages. Proc Natl Acad Sci USA 2007;104(49):19446–19451. https://doi.org/10.1073/pnas.0706832104.

30. Romano M, Fanelli G, Tan N et al. Expanded regulatory T cells induce alternatively activated monocytes with a reduced capacity to expand T Helper-17 cells. Front Immunol 2018;9:1625. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.01625.

31. Morgun EI, Vorotelyak EA. Epidermal stem cells in hair follicle cycling and skin regeneration: a view from the perspective of inflammation. Front Cell Dev Biol 2020;8:581697. https://doi.org/10.3389/fcell.2020.581697.

32. Nosbaum A, Prevel N, Truong H et al. Cutting edge: regulatory T cells facilitate cutaneous wound healing. J Immunol 2016;196(5):2010–2014. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1502139.

33. Ali N, Zirak B, Rodriguez RS et al. Regulatory t cells in skin facilitate epithelial stem cell differentiation. Cell 2017;169(6):1119–1129. https://doi.org/10.1016/j.cell.2017.05.002.

34. Mathur AN, Zirak B, Boothby IC et al. Treg-cell control of a CXCL5-IL-17 inflammatory axis promotes hair-folliclestem-cell differentiation during skin-barrier repair. Immunity 2019;50(3):655–667.e4. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2019.02.013.

35. Ali N, Rosenblum MD. Regulatory T cells in skin. Immunology 2017;152(3):372–381. https://doi.org/10.1111/imm.12791.